1. 有哪些容易做的微生物實驗
做革蘭氏染色吧！比較簡單又有一定的技術含量。
一、實驗步驟
革蘭氏染色法一般包括初染、媒染、脫色、復染等四個步驟，具體操作方法是：
1）塗片固定。
2）草酸銨結晶紫染1分鍾。
3）自來水沖洗。
4）加碘液覆蓋塗面染約1分鍾。
5）水洗，用吸水紙吸去水分。
6）加95%酒精數滴，並輕輕搖動進行脫色，20秒後水洗，吸去水分。
7）蕃紅梁色液（稀）染2分鍾後，自來水沖洗。乾燥，鏡檢。
二、實驗原理：通過結晶紫初染和碘液媒染後，在細胞壁內形成了不溶於水的結晶紫與碘的復合物，革蘭氏陽性菌由於其細胞壁較厚、肽聚糖網層次較多且交聯緻密，故遇乙醇或丙酮脫色處理時，因失水反而使網孔縮小，再加上它不含類脂，故乙醇處理不會出現縫隙，，因此能把結晶紫與碘復合物牢牢留在壁內，使其仍呈紫色；而革蘭氏陰性菌因其細胞壁薄、外膜層類脂含量高、肽聚糖層薄且交聯度差，在遇脫色劑後，以類脂為主的外膜迅速溶解，薄而鬆散的肽聚糖網不能阻擋結晶紫與碘復合物的溶出，因此通過乙醇脫色後仍呈無色，再經沙黃等紅色染料復染，就使革蘭氏陰性菌呈紅色。
三、染色結果
革蘭氏正反應菌體都呈紫色，負反應菌體都呈紅色。
2. 微生物試驗中，菌種的傳代實驗怎麼做微生物的酶活怎麼測
微生物傳代最常用的就是斜面接種法，大致意思就是你從原代菌種里挑一點劃線法保存到小試管里的斜面培養基上，進而讓菌種不斷增殖保存下來。 其方法步驟如下：首先，點燃酒精燈。將菌種和斜面培養基的兩只試管平行放在左手上，用拇指與其它四指夾住，並使中指位於兩試管之間，兩試管的管口齊平（圖9－5①）。其次，用右手先將棉塞擰轉松動，並稍拉出一些，以利又質卑緯觶ㄍ?9－5②）。第三，右手持接種針，在酒精燈將針頭部分燒紅滅菌（圖9-5③）。針頭以上凡是接種時可能進入試管的部分，均應用火灼燒。以下操作都要使試管口靠近火旁。第四，用右手的小指與掌間拔掉左手上兩只試管上的棉塞，同時迅速將試管口在酒精燈上燒灼3秒鍾左右，使管口上可能沾染的少量雜菌得以燒死。第五，將燒過的接種針伸入菌種管內，先將針頭接觸培養基上沒有菌的部位（如斜面的頂端），使其冷卻，以免燙死被接種的菌體。然後輕輕接觸菌體，取出少許，慢慢將接種針抽出試管，接種針抽出時不要使針頭部分碰到管壁和管口，取出後，不可使針頭通過火焰，更不可觸及其它無關物品或桌面。第六，迅速將接種針伸進另一試管，在培養基上輕輕劃線，接種菌體於其上。劃線時，要由底部起劃較密的平行線，一直劃到頂部，以充分利用斜面面積，但不要將培養基劃破。第七，燒灼試管口，將棉塞塞上。塞棉塞時，不要移動試管迎接棉塞，以免試管在移動中納入可能含菌的空氣。第八，將針頭在火焰上燒灼滅菌。放回原處後，騰出手將棉塞塞緊。二、關於微生物酶活性測定，比較復雜，網上比較多，不同酶測定方法也不一樣，同學你自己慢慢查吧，O(∩_∩)O哈哈~
3. 微生物實驗
一片白？全是菌落嗎？如果是的話就是你塗平板時用的菌液太濃導致菌落和菌落之間無法分開，連成一片。另外，塗布時用的塗布棒或是接種環在灼燒後應接觸培養皿上蓋內側一會兒，在降溫後在去接觸菌液，不然容易燙死細菌。
服了你，我敢肯定你取樣後肯定就直接將樣品全倒到培養基上了，這是不正確的，樣品必須進過稀釋，否則菌落密度很高，連成一片。
1.首先，你得根據你所要的細菌設計一培養基，盡可能使得只有你要的這一細菌能在培養基上生存，如果不考慮細菌的種類，只考慮他們的數量的話，則可以用全營養培養基。
2.然後算樣品液的總體積，從中取1ml出來放進一滅菌試管中，加液體培養基9ml，搖勻，此時菌液被稀釋10倍。再從這一試管中取1ml液體加入另一無菌試管中，在往這新的試管中加入液體培養基9ml，此時新試管中的菌液被稀釋了100倍，重復，下去，直到被稀釋100000倍後為止。
3.接著將上述試管中的菌液各取1ml注入到固體培養基上（此時又相當於在各試管稀釋的基礎上又稀釋了10倍），用滅菌塗布棒塗布均勻，進行培養。
最後，找出菌落分散較好的培養基，計數菌落，然後乘以稀釋倍數（要包括步驟3中的那10倍）再乘以你得樣品的總體積數，從而得出細菌總數。
注意：以上操作必須在無菌條件下進行。
4. 微生物檢測實驗中怎麼做10倍液，50倍液，百倍液，還有千倍液
這個叫「微生物菌液的稀釋」。
吸取1ml原菌液，放入9ml無菌生理鹽水中，混合均勻，就是10倍稀釋液。
吸取2ml10倍稀釋菌液，放入8ml無菌生理鹽水中，混合均勻，就是50倍稀釋液。
吸取1ml10倍稀釋菌液，放入9ml無菌生理鹽水中，混合均勻，就是100倍稀釋液。
吸取1ml100倍稀釋菌液，放入9ml無菌生理鹽水中，混合均勻，就是1000倍稀釋液。
5. 怎樣設計一個微生物實驗
主要是要控制變數，注意引入菌種前高溫殺菌以保證實驗准確。
6. 常見微生物實驗步驟怎麼寫
1、葯敏試驗：主要是通過測定抑菌圈的范圍來確定葯物的療效。
2、血凝實驗：通過測定病毒與紅細胞反應的濃度測定其抗體效價。
3、PCR：細菌主要通過16srRNA確定其細菌的種類。
4、中和實驗：主要測定病毒的稀釋濃度。
5、革蘭氏染色：確定是革蘭氏陽性還是陰性
6、瑞氏染色：主要是對細菌染色。
7. 微生物實驗設計
2、對目標菌在生化特性、培養特性、生物安全性等方面進行研究，並對其代謝產物進行分析，為進一步完善產物獲取提供實驗依據。
3、對於工業應用的預實驗。
以上是比較傳統的利用培養基法進行細菌篩選。不過隨著分子生物學等相關學科的發展，在菌種篩選中可以利用的技術也越來越多，往往可以利用特定的高效基因片段的篩選來找到特定要求的菌種。
同時利用分子雜交等技術，在現有生產菌或者目標菌的基礎上進行基因改良，插入高效片段，獲得穩定純培養物後，在按照菌種培養物傳統鑒定（生化、培養、安全性等）最後完成一個工業菌種的篩選過程。
8. 做微生物實驗的步驟
操作步驟
1．塗片將培養14—16小時的枯草芽孢桿菌和培養24小時的大腸桿菌分別作塗片（注意塗片切不可過於濃厚），乾燥、固定。固定時通過火焰1—2次即可，不可過熱，以載玻片不燙手為宜。
2．染色
（1）初染
加草酸銨結晶紫一滴，約一分鍾，水洗。
（2）媒染
滴加碘液沖去殘水，並覆蓋約一分鍾，水洗。
（3）脫色
將載玻片上面的水甩凈，並襯以白背景，用95％酒精滴洗至流出酒精剛剛不出現紫色時為止，約20—30秒鍾，立即用水沖凈酒精。
（4）復染
用番紅液染1—2分鍾，水洗。
（5）鏡檢
乾燥後，置油鏡觀察。革蘭氏陰性菌呈紅色，革蘭氏陽性菌呈紫色。以分散開的細菌的革蘭氏染色反應為准，過於密集的細菌，常常呈假陽性。
（6）同法在一載玻片上以大腸桿菌與枯草芽孢桿菌混合製片，作革蘭氏染色對比。
革蘭氏染色的關鍵在於嚴格掌握酒精脫色程度，如脫色過度，則陽性菌可被誤染為陰性菌；而脫色不夠時，陰性菌可被誤染為陽性菌。此外，菌齡也影響染色結果，如陽性菌培養時間過長，或已死亡及部分菌自行溶解了，都常呈陰性反應。
9. 微生物學實驗設計
沒有什麼時間，我簡單解釋一下，語言你可以自己組織，意思對了豐富一下以下內容就可以了哈：
1、取材。指材料選擇，微生物分離一般來源是自然界的土壤及其他生物體內。你最好選擇在常年高溫的環境中采樣。譬如火山口，熱泉口，常年高溫的戈壁沙漠土壤等。
2、分離。指分離野生菌株。在實驗室，分離微生物的傳統途徑是選擇合適的培養基選擇性分離土壤中的微生物，這個題目的要求說明實驗中需要在高溫條件培養，最好選用多種培養基，以便於分離到種類較多的各類微生物。相關實驗技術請自行查閱書籍。
3、純化。微生物分離過程中重要一步，目的是需要得到菌株的純培養，即多次純化過程中需挑取單菌落接種擴培，同時可以起到活化菌株生命力的作用。當然此過程中合適的培養基相當重要。否則菌株可能反而退化失活。
4、篩選。獲得適合高溫生長的菌株庫之後，依據要求篩選菌株。即指提供單因子培養條件篩選，譬如選擇能產高溫蛋白酶的，需要在培養基中單一添加高級蛋白（即未降解過的或未腖化過的）作為氮源，以葡萄糖或其他易利用糖類作單一碳源。又如選擇產高溫澱粉酶的，以澱粉作為單一碳源，補充其他無碳利用的氮源。能在選擇條件下生長的為目的菌株。
5、確證。得到目的菌株後即可通過相應的酶提取方法確證。提取總酶在高溫條件下進行體外蛋白消化或者澱粉消化實驗來確證。
10. 微生物陽性實驗怎麼做
陽性和陰性，描述的是某一具體實驗的實驗結果，而不是該實驗。一般我們認為某一受試物參與具體實驗後，發生某種反應，並產生了與實驗指標相符的且可被檢出的效應時，即認為是實驗結果陽性。