如何培育生物病毒樣本

❶ 培養病毒用什麼樣的培養基

培養病毒不能用普通培養基。
病毒是非細胞生物，本身缺乏生長增殖所需要的完整酶系，所以不能在普通的培養基上培養，只能在活細胞內培養。就是讓病毒寄生在活細胞內實現增殖。
一般來說人工培養病毒可以用實驗動物、雞胚以及體外培養的動物器官和/或細胞。

❷ 如何製作生物病毒模型 快...............

找一根鐵絲,彎成螺旋型,螺距大一點,再用紙揉成團（做很多個）,一個一個粘在鐵絲上,就是一個典型的植物病毒的樣子了.

❸ 病毒的培養方法有哪些為什麼不能用一般培養基來培養病毒

病毒的培養方法：
（1）動物接種：病毒經注射、口服等途徑進入易感動物的體內後可大量增殖，並使動物產生特定的反應。優點：操作方面易行。缺點：受機體免疫力的影響，常需要用無菌動物。運用：分離、增殖病毒，疫苗效力試驗，疫苗和抗血清的生產。
（2）雞胚培養：一般用9-12日齡的雞胚，分別接種於卵黃囊內，羊膜腔，尿囊腔等部位。病毒生長的標志為雞胚死亡、畸型和出血。用於病毒分離與疫苗生產。
（3）組織培養：在離體活細胞上培養病毒的方法。
因為大部分病毒只有蛋白外殼及核酸遺傳物質，沒有完整的細胞結構，不能獨立生存，一般的培養基適用於培養細菌、細胞的，病毒不能利用其中的營養物質來生存。

❹ 如何獲得某一細菌的純培養（或病毒的純培養)簡述整個過程。

先對分泌物進行第一次培養後，挑出其中的可疑菌落，一環就夠了，然後接種到一個新的培養基再培養，這就是細菌的分離純化過程，也就是純培養，整個過程一定要注意無菌操作，挑選可以菌落時，一定要注意和雜菌區分。

很多細菌無法培養。能培養的細菌需要去查它的培養基配方，和培養時的條件。病毒一般是作為二元培養物而存在，也就是感染易感菌。當然也有許多並不不能培養。

(4)如何培育生物病毒樣本擴展閱讀：

純培養最重要的是在於微生物的生理研究，方法是依靠滅菌和分離，是由巴斯德（L．Pasteur）和柯赫（R．Koch）建立起來的。在自然界中，有的培養條件很困難，特別是具有密切共生關系的生物及進行寄生性營養的生物；也有一些在理論上不可能進行純粹培養的生物。

❺ 如何培養病毒

培養某個生命，要給它養料。病毒只能以活細胞內的營養物質生活。所以要以活細胞為「培養基」來培養。具體做法以噬菌體病毒的培養為例：在培養基中加入完全培養液，再加入適量的大腸桿菌，然後接入噬菌體病毒，蓋上蓋子，放在適宜條件下就行了。

❻ 生物學實驗中病毒怎麼保種和接種

1.應該在細胞狀態最好的時候,進行病毒接種或復甦;

2.接種前頭天,進行細胞傳代,細胞數量應以能讓細胞在第二天內達到覆蓋滿90%的培養瓶為准,並且一定要在細胞傳代後48h內接種病毒;

3.第二天細胞長為單層且狀態較好時,開始接種病毒;

4.先移棄培養瓶中的生長液,用1*PBS輕輕洗細胞面3次,最後用移液管吸干凈培養瓶中殘留的1*PBS.為保持培養瓶中pH環境的穩定,及減少1*PBS對細胞的刺激作用,可再用生長液輕輕洗細胞面1次,移棄液體,並用移液管吸干凈瓶中殘留生長液;

5.接種病毒:

①. 一般種毒量按最後所需加入維持液體積的10%,15%或20%來計算,一般10%即可,若希望病變速度快一些,可以加大種毒量,如15%或20%;

②. 如果用小塑料瓶種毒,一般該培養瓶加8-9ml培養液,加入0.8ml病毒即可,病毒加入後,蓋上瓶塞,輕輕將搖晃瓶子,讓病毒液在細胞面上來回10幾次;

③. 在對照細胞中,加入相同的0.8ml維持液;

6.將種毒瓶和對照瓶一起放入37oC,CO2烘箱培養1h,其中每隔15min,需要將種毒瓶和對照瓶拿出,輕輕搖晃瓶子,保證病毒液或維持液能在細胞面上來回20-30次,使病毒液或維持液能充分接觸細胞;

7.1h後,在晃動瓶子4次後,重新進入無菌間,在培養瓶中加入維持液;

①. 維持液配方一:

MEM 2鸖 3%谷氨醯胺 1%雙抗 NaHCO3(其用量以調節pH至7.0為准,濃度為6%);

②. 維持液配方二:

MEM 3%谷氨醯胺 1%雙抗 NaHCO3(其用量以調節pH至7.0為准,濃度為6%);

③. 一般還是使用有FBS的維持液,因為對細胞有一定的保護作用;

8.將加完維持液的培養瓶放回37oC,CO2烘箱培養,每天觀察,如果有條件,可以每天拍照,直到有90%的細胞出現CPE後,可以進行收毒;

9.收毒可以用反復凍融方法:即將細胞培養瓶放入-20oC冰箱,凍起來後,直接拿出來等起融化後,使勁搖晃瓶子,讓細胞破裂釋放出病毒顆粒,這樣反復4次,即可達到收毒目的;

10.收毒後的病毒液可以用移液管吸入離心管,在1,000-2,000轉下離心10mins,以此除去細胞碎片,將離心後的上清夜轉移,棄底部沉澱,該上清液即可用於病毒濃縮醇化,或病毒滴度測定,或中和試驗等。

❼ 常見病毒的培養方法 及其具體的過程！

我見過的有雞胚胎法。

病毒研究的發展常常與病毒培養和檢測方法的進步有密切的關系，特別在脊椎動物病毒方面，小鼠和雞胚接種、組織培養、超速離心、凝膠電泳、電子顯微鏡和免疫測定等技術，對病毒學的發展具有深刻的影響。

噬菌體的培養和檢測方法最為簡單。將噬菌體接種到易感細菌的肉湯培養物中，經18～24小時後，混濁的培養物重新透明，此時細菌被裂解，大量噬菌體被釋放到肉湯中，再經除菌過濾，即為粗製噬菌體。為了測定其中噬菌體的數量，將粗製噬菌體稀釋到每一接種量含100個左右，與過量的細菌混合，然後鋪種於瓊脂平皿上，在溫箱中培養過夜，細菌繁殖成乳白色襯底，被噬菌體裂解的區域則在此襯底上表現為圓形的透明斑，稱為噬斑。噬斑數代表該接種量中有活力的噬菌體數量。如果挑出單個噬斑來培養，就能獲得由單個噬菌體所繁殖的後代，達到分離純化的目的。

動物病毒（見脊椎動物病毒）的培養可在自然宿主、實驗動物、雞胚或細胞培養中進行，以死亡、發病或病變等作為病毒繁殖的直接指標，或以血細胞凝集、抗原測定等作為間接指標。收獲發病動物的組織磨成懸液或有病變的細胞培養液，即為粗製病毒。測定活病毒數量可採用空斑法，其原理與噬斑法相同，但以易感的動物單層細胞代替細菌，在接種適當稀釋的病毒後，用含有培養液和中性紅的瓊脂覆蓋，使病毒感染局限在小面積內形成病變區，襯底的健康細胞被中性紅染成紅色，病變區不染色而顯示為空斑。

至今植物病毒的培養和檢測大都是在整株植物上進行的。從搗碎的病葉汁中制備病毒，常用枯斑法檢測。用手指蘸上混有金剛砂的稀釋病毒在植物葉片上軒輕磨擦，經一定時間後出現單個分開的圓形壞死或退綠斑點，稱為枯斑。

除了利用病毒的致病性定量檢測病毒外，還可應用物理方法，如在電子顯微鏡下計數病毒顆粒，或用紫外分光光度計測定提純病毒的蛋白和核酸量，這些方法所測得的數據包括了有感染性和無感染性的病毒粒。

應用電子顯微鏡不但能看清病毒粒的大小、形態，還可以分辨其表面的蛋白亞單位和內部的核殼等超微結構。

❽ 如何培養微生物

液體接種
從中海生物技術固體培養基中將菌洗下，倒入液體培養基中，或者從液體培養物中，用移液管將菌液接至液體培養基中，或從液體培養物中將菌液移至固體培養基中，都可稱為液體接種
穿刺接種
在保藏厭氧菌種或研究微生物的動力時常採用此法。做穿刺接種時，用的接種工具是接種針。用的培養基一般是半固體培養基。它的做法是：用接種針蘸取少量的菌種，沿半固體培養基中心向管底作直線穿刺，如某細菌具有鞭毛而能運動，則在穿刺線周圍能夠生長
活體接種
活體接種是專門用於培養病毒或其它病原微生物的一種方法，因為病毒必須接種於活的生物體內才能生長繁殖。所用的活體可以是整個動物；也可以是某個離體活組織，例如猴腎等；也可以是發育的雞胚。接種的方式是注射，也可以是拌料喂養
澆混接種
該法是將待接的微生物先放入中海生物的培養皿中，然後再倒入冷卻至45°C左右的固體培養基，迅速輕輕搖勻，這樣菌液就達到稀釋的目的。待平板凝固之後，置合適溫度下培養，就可長出單個的微生物菌落
劃線接種
這是最常用的接種方法。即在固體培養基表面作來回直線形的移動，就可達到接種的作用。常用的接種工具有接種環，接種針等。在斜面接種和平板劃線中就常用此法
塗布接種
與澆混接種略有不同，就是先倒好平板，讓其凝固，然後再將菌液倒入平板上面，迅速用塗布棒在表面作來回左右的塗布，讓菌液均勻分布，就可長出單個的微生物的菌落

❾ 高一生物題：如何培養病毒

要在有寄主的培養基里培養...因為病毒是原核(大多數的營養和細胞器使用來自寄主)...培養基是營造一個生存的環境...提供給寄主生存...所以要在有寄主的培養基里培養...

❿ 生物作業：如何培養病毒

雞胚培養，因為不太可能是大學，所以隨便不說詳細